细胞分选技术:流式分选与磁珠分选全面解析

技术原理

01
流式分选/ FACS

流式分选,全称为荧光激活细胞分选(Fluorescence-Activated Cell Sorting),是基于流式细胞术的高端应用。其核心原理是流体动力学聚焦和静电偏转。
液流聚焦:细胞悬液在鞘液的包裹下,被挤压成极细的液流,使细胞逐个排列通过激光检测点。
多参数检测:每个细胞在通过激光时,会产生两种散射光信号:
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前向散射光(FSC):反映细胞的相对大小。
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侧向散射光(SSC):反映细胞的内部复杂程度(如颗粒度)。
同时,如果细胞预先经荧光抗体标记,还会激发出特定波长的荧光信号,用于检测细胞表面或内部的特定蛋白分子。
充电偏转:仪器根据预设的多种参数(如FSC、SSC和多种荧光)来识别目标细胞。使液流断裂成极小的液滴,并对包含目标细胞的液滴充电(正电荷或负电荷)。
电场分离:带电液滴在通过高压静电场时发生偏转,落入指定的收集容器中。不带电的液滴则进入废液收集器,从而实现细胞的分选。
磁珠分选/ MACS
02

磁珠分选,全称为磁性激活细胞分选(Magnetic-Activated Cell Sorting),其核心原理是免疫磁珠法。
磁性标记:使用超顺磁性纳米微珠(通常直径为50-150nm)偶联的特异性抗体与细胞表面抗原结合,从而对目标细胞进行“磁性标记”。
磁场分离:将标记后的细胞悬液通过一个放置于强永久磁场中的分选柱。
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阳性分选:被磁珠标记的细胞(目标细胞)会被磁场吸附在分选柱内壁,而未标记的细胞则直接流出。将分选柱移出磁场后,即可将吸附的目标细胞洗脱下来进行收集。
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阴性分选:用磁珠标记所有不需要的细胞,使其被吸附在柱内,而所需的目标细胞因未被标记而直接流出,实现收集。

实验流程对比

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步骤 |
流式分选 |
磁珠分选 |
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样本制备 |
制备高质量的单细胞悬液,确保高活性、低碎片。 |
制备单细胞悬液。 |
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抗体标记 |
使用多种荧光抗体进行染色,需设置复杂的补偿对照。 |
使用磁珠偶联的抗体进行孵育(直接法或间接法)。 |
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仪器准备 |
启动仪器,进行光路、液路校准,耗时较长,需专业操作。 |
将分选柱置于磁力架上,用缓冲液冲洗备用。 |
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分选过程 |
细胞逐个检测,根据多参数设门(Gating)实时分选,速度较慢。 |
细胞悬液上柱,依靠重力或压力自然流下,过程快速。 |
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细胞收集 |
分选细胞直接落入含培养液的收集管或孔板中。 |
收集流出液(阴性分选)或洗脱液(阳性分选)中的细胞。 |
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后续处理 |
通常需要离心去除鞘液后再用于后续实验。 |
离心去除缓冲液后即可使用。 |
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仪器维护 |
需要严格的清洗和消毒程序,防止交叉污染。 |
简单清洗或使用一次性分选柱,维护简单。 |


技术特点与注意事项

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特性 |
流式分选 |
磁珠分选 |
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主要优点 |
多参数、高纯度、高灵活性,可进行稀有细胞分选和单细胞分选。 |
快速、简单、温和、成本低,通量高,易于无菌操作。 |
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主要缺点 |
仪器昂贵、操作复杂、速度较慢,可能影响细胞活性。 |
通常为单参数分选,分辨率较低,难以区分表达量差异,纯度可能稍低。 |
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关键注意事项 |
细胞活性至关重要:死细胞和结团会堵塞喷嘴。 无菌要求高:需对仪器消毒。 必须设置精确的补偿和对照,以确保分选准确性。 |
避免分选柱过载:需按细胞量选择合适型号的分选柱。 缓冲液需含EDTA:防止细胞粘连。 磁珠可能影响下游实验:某些敏感实验需选择可降解磁珠。 |


应用场景


流式分选 (FACS) 适用于
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多参数复杂分选:需要同时根据多个表面标志物(如CD3+CD4+CD25+CD127low Treg细胞)进行分选。
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稀有细胞群分选:频率低于0.01%的稀有细胞亚群。
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需要最高纯度(>98%)的实验:如单细胞测序、克隆形成实验。
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功能学研究:根据细胞内因子分泌(胞内染色)、信号通路激活(磷酸化流式)、Ca2+ flux等进行分选。
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单细胞分选:直接将单个细胞分选到96或384孔板中,用于单细胞克隆、单细胞PCR或测序。

磁珠分选 (MACS) 适用于
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批量富集/去除:快速从大量细胞中富集或去除某一常见细胞群体(如从外周血单个核细胞PBMCs中分选CD4+ T细胞)。
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简单分选:分选依据单一或很少( sequential MACS)的表面标志物。
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对细胞活性要求高:过程更温和,细胞活力和功能恢复更好。
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预算有限或实验室无流式分选仪:操作简单,仪器(磁力架)成本极低。
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预富集:作为流式分选的前置步骤,先通过MACS粗富集目标细胞,减少上流式仪的细胞量,提高分选效率和纯度。
如何选择?
流式分选(FACS)与磁珠分选(MACS)是两大相辅相成的技术平台,并无绝对优劣之分。
FACS如同精密的“激光手术刀”,可实现多参数、高精度的分选;如果你的实验需要根据多个标记来精确界定细胞群体、分选稀有细胞或进行单细胞操作,并且对纯度要求极高,请选择流式分选。
而MACS则像高效的“磁力过滤器”,操作简单快速、成本低,更利于维持细胞功能。如果你的目标是快速、简单、低成本地从大量细胞中富集或去除某一表达特定标记的细胞群体,且对活性和功能保持要求高,请选择磁珠分选。
选择时需根据实验目的、纯度与活性要求、样本量、参数数量及预算等因素综合考量。
在实践中,二者常联合使用:先以MACS进行粗富集,提高目标细胞比例,再借助FACS进行精细分选,从而在保证高纯度的同时,显著提升分选效率、降低成本。这种策略已成为许多高级研究中的优选方案。
如上文所述,磁珠分选(MACS)凭借其快速、简单、温和且经济的独特优势,是批量富集或去除特定细胞群体的理想选择。当您的实验目标明确,无需多参数复杂分析,且对细胞活性与功能保有极高要求时,MACS提供了最优的解决方案。
代轩生物深耕于此,为您提供专业、高效的磁珠分选(MACS)服务,致力于成为您科研道路上可靠、高效的“磁力过滤器”,帮助您从大量起始样本中轻松获得高活性的目标细胞。

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我们深知“样本质量是分选成功的基石”。我们的团队具备处理多种复杂样本的丰富经验(如外周血、脾脏、淋巴结、肿瘤组织、贴壁细胞等),严格把控单细胞悬液制备的每一个环节,确保高细胞活率和低碎片率。分选前后,我们均通过流式细胞术进行严格的质量控制,为您提供详尽的细胞活性、纯度及得率报告,保证数据的真实性与可靠性。
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我们的实验设施及操作流程严格遵循生物安全等级(BSL-2)标准,全过程于超净工作台或生物安全柜中进行,确保分选后的细胞无支原体及外源因子污染,活率高,可直接用于敏感的体外培养、体内移植等下游实验。
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