动物模型构建丨小鼠颅内成瘤模型构建及相关研究应用

核心结构:必须包含标注的关键解剖结构:

  • sagittal suture(矢状缝):左右顶骨间的正中纵行骨缝

  • lambdoid suture(人字缝):顶骨与枕骨间的A形后颅缝

  • Bregma(冠矢点/前囟点):冠状缝与矢状缝的交汇点

  • Lambda(人字点/后囟点):矢状缝与人字缝的交汇点

小鼠颅内成瘤(以脑胶质瘤为例)是通过脑立体定位仪精准将肿瘤细胞注射至指定脑区(如纹状体、额叶)的标准造模方法,核心是固定稳、定位准、注射慢、封闭严。以下是完整、可直接操作的标准流程:

 

实验准备(术前1-2天)

 

动物与细胞

 

动物:6-8周龄、18-22g SPF级小鼠(免疫正常用C57BL/6;异种移植用裸鼠BALB/c nude)。

细胞:胶质瘤细胞(U87、C6、GL261等),胰酶消化、离心重悬为1×10⁷~5×10⁷ cells/mL的无菌悬液,置于冰上备用。

 

仪器与耗材

 

仪器:脑立体定位仪(含耳杆、门齿夹、三维操作臂)、高速颅钻、微量注射器(10μL)、微量注射泵、手术显微镜、加热垫。

耗材:碘伏、75%酒精、骨蜡、5-0/6-0缝合线、眼科剪、镊、止血钳、无菌棉签、眼膏。

麻醉:异氟烷(诱导2%-4%,维持1%-2%);或戊巴比妥钠(80mg/kg)、氯胺酮/赛拉嗪(100/5mg/kg)腹腔注射。

 

 

 

标准操作步骤

 

Ps. 全程无菌

 

 

麻醉与固定

 

 

关键:水平、稳固

  1. 深度麻醉小鼠(角膜反射消失、后肢无回缩),眼部涂眼膏防干燥。

  2. 剃除头顶毛发,碘伏+酒精交替消毒3次。

  3. 固定于定位仪:

    门齿卡入门齿夹,轻压固定(不影响呼吸)。

    双侧耳杆对称、等刻度插入外耳道,锁紧;确保头部不晃动、提尾不掉、Bregma与Lambda在同一水平面(高差<0.05mm)。

 

 

 

定位与钻孔

 

 

以纹状体/额叶为例

  1. 沿中线纵向切开头皮(约1cm),钝性分离、擦除骨膜,暴露Bregma点(冠状缝+矢状缝交点)。

  2. 定位仪针尖对准Bregma,三轴清零(X=0,Y=0,Z=0)。

  3. 目标坐标(常用)

    右额叶/纹状体:X=+1.02.0mm(旁开),Y=+0.51.0mm(前囟前),Z=2.8~3.2mm(深度),根据需要可以自行调整;

    移动操作臂至坐标,记号笔标记颅骨。

  4. 颅钻钻孔:低速钻透颅骨(直径≈0.5mm),不损伤硬脑膜。

 

 

 

细胞注射

 

 

核心:慢、稳、防反流

  1. 微量注射器吸取35μL细胞悬液(约3*104-1*106个),排净气泡。

  2. 针尖垂直钻孔,缓慢进针至目标深度(Z),再回退0.4~0.5mm(形成腔隙防挤压)。

  3. 注射参数:12μL/min,全程≥35min;注射后留针5~10min。

  4. 缓慢拔针(防负压反流),骨蜡严密封闭骨孔。

 

 

 

术后处理

 

 
  • 缝合头皮,碘伏消毒;小鼠置于37℃加热垫复温苏醒。

  • 术后24h观察:单笼饲养、自由饮食;必要时预防性用抗生素。

 

关键质控要点(成功率>90%)

 

 

 

固定水平:Bregma-Lambda高差<0.05mm,否则定位偏差。

钻孔:仅穿颅骨、不刺破脑膜;出血用明胶海绵轻压。

注射:慢注+留针是减少反流、提高成瘤率的核心。

深度:小鼠脑厚≈3~4mm,Z=3.0mm左右为纹状体,过深伤脑干、过浅在硬膜外。

 

成瘤观察与终点

 

 

 

7~10天起出现症状:消瘦、精神差、转圈、偏瘫、弓背。

活体成像(Luc细胞)第7天可检测信号;MRI可显占位。

伦理终点:体重下降>20%、严重神经症状时安乐死。

 

 

 

常见问题、安全伦理

 

 

 

 

Solution

常见问题与解决方案

 

问题现象

可能原因

解决方案

细胞反流

注射过快、留针短、拔针快

减慢速度、延长留针、缓拔针

动物死亡

麻醉过深、伤脑干、出血

控麻醉深度、精准深度、止血

成瘤率低

细胞活力差、数量不足、位置错

保证细胞活率、优化坐标

 

安全与伦理

 

 

 

  • 严格遵守动物伦理与SPF操作;术后镇痛(美洛昔康)。

  • 器械高温灭菌,台面消毒,避免颅内感染。

 

 

 

相关研究应用

 

 

抗肿瘤药物筛选与评价

通过模型评估化疗药物(替莫唑胺)、靶向药物、纳米药物递送系统的体内疗效及血脑屏障穿透能力,以小鼠生存期延长、肿瘤体积缩小(MRI/活体成像)为终点。

 

免疫治疗研究

在免疫完整小鼠(如C57BL/6接种GL261细胞)中,评价免疫检查点抑制剂(PD-1/CTLA-4抗体)、CAR-T细胞、溶瘤病毒、肿瘤疫苗等对脑胶质瘤微环境的调控作用及治疗效应。

 

肿瘤侵袭与转移机制

利用荧光/萤光素酶标记的肿瘤细胞,实时追踪颅内肿瘤的侵袭边界、沿白质束迁移的路径,研究基质金属蛋白酶(MMPs)、趋化因子等在脑内扩散中的作用。

 

脑胶质瘤干细胞(GSCs)研究

将分选出的CD133+/SOX2+胶质瘤干细胞注射至小鼠脑内,构建耐药、复发模型,探索靶向GSCs的干预策略。

 

联合治疗与放疗增敏

结合立体定向放疗与药物(如PARP抑制剂、血管生成抑制剂),在小鼠模型中验证协同效果,模拟临床术后放化疗方案。

 

影像学生物标志物开发

结合高场强MRI(弥散加权、灌注成像)或PET,建立与肿瘤增殖活性、缺氧区域、坏死程度对应的影像参数,用于临床转化预测。

 

肿瘤微环境(TME)研究

通过流式细胞术、免疫组化(Iba-1, GFAP, CD31)分析肿瘤相关小胶质细胞、星形胶质细胞、血管形态的变化,揭示胶质瘤与宿主脑组织的相互作用。

 

END

 

小鼠颅内成瘤模型凭借其精准的脑区定位、高度可控的肿瘤生长及与临床相似的病理特征,已成为脑胶质瘤研究的核心工具。该模型广泛应用于抗肿瘤药物筛选、免疫治疗评估、肿瘤侵袭机制及微环境研究等领域,为基础与临床转化之间架起了关键桥梁。合理应用此模型,有助于深入理解脑肿瘤发病机制,并推动新型治疗策略的临床前验证。

 

 

 

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创建时间:2026-06-26 15:36